1.待提取樣本盡量避免反復凍融，否則會導致提取的DNA片段降解或者DNA得率嚴重下降；

　　2.試劑盒中BufferEB中含有少量EDTA，可能影響下游實驗，使用時適當稀釋，如果用其他洗脫液洗脫，要確保PH>7.5，PH過低影響洗脫效率；

　　3.離心柱漂洗完成后，盡可能烘干柱膜上殘留乙醇，殘留乙醇會影響洗脫效率和下游實驗效果；如果A260/230值過低，說明樣本提取過程中，漂洗不徹底，有鹽離子殘留，建議增加漂洗次數(shù)；

　　4.對于基因組DNA提取，A260/280值如果低于1.7說明有可能存在蛋白污染，如果值大于1.9，說明可能存在RNA污染；如果洗脫樣本時沒有使用BufferEB，而使用ddH20，比值或偏低，因為Ph值會影響吸光值，并不表示樣本純度低；

　　5.對于植物樣本，樣本處理量無法統(tǒng)一確定，對于一般樣本（煙草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg干重組織，對于復雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg干重組織；如果需要較高的DNA量，可以采取多管濃縮的方法提取DNA;

　　6.對于植物樣本，如果短時間不能低溫處理，建議使用硅膠顆粒干燥樣本，防止DNA嚴重降解；研磨處理材料過程中盡量不要過量，否則會導致DNA產(chǎn)量低；材料過量也會使樣本出現(xiàn)團塊無法裂解，導致離心柱堵塞，無法獲得高質(zhì)量DNA;

　　7.植物組織在降低初始樣品量后，仍舊無法改變裂解液體粘稠，離心柱堵塞，DNA得率低，建議使用本公司BufferPL對樣本預處理1-3次后在進行提?。?/p>

　　8.對于血液樣本，最好使用新鮮血液樣本或者4℃存放少于2天的樣本，否則會嚴重降低DNA產(chǎn)量；盡量避免反復凍融（不超過3-5次），每一次凍融都會降低DNA得率；

　　9.對于血液樣本，如果樣本中含有血塊，說明樣本收集時未加入血液抗凝劑；建議重新收集樣本并加入EDTA，肝素，檸檬酸等抗凝劑；

　　10.在使用紅細胞裂解液處理血液時，確保血液樣本已經(jīng)恢復到室溫狀態(tài)；處理過程中盡可能混勻樣本，防止紅細胞裂解不完全；

　　11.對于細菌樣本DNA提取，試劑盒中的溶菌酶可以裂解大部分革蘭式陽性細菌，對于特殊細菌如葡萄球菌，需要提高溶菌酶用量（建議10mg/ml溶菌酶使用量增加一倍）和溶葡萄球菌酶（Lysostaphin）共同使用；

　　12.DNA濃度及純度判斷：[DNA]μg/ml=A260 x稀釋倍數(shù)x50.0 （50.0：DNA的平均吸收系數(shù)）；