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軟X射線(xiàn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)顯微鏡——SXT-100

軟X射線(xiàn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)顯微鏡——SXT-100
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軟X射線(xiàn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)顯微鏡——SXT-100

  SXT-100是愛(ài)爾蘭SiriusXT公司推出的一款實(shí)驗(yàn)室級(jí)軟X射線(xiàn)顯微鏡,無(wú)需同步輻射光源,實(shí)驗(yàn)室即可實(shí)現(xiàn)細(xì)胞的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)成像。在細(xì)胞原生狀態(tài)下,經(jīng)過(guò)少量的制備步驟,無(wú)需固定、染色或使用其他增強(qiáng)對(duì)比度的方法,即可對(duì)厚度高達(dá)15μm的整個(gè)含水細(xì)胞的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)進(jìn)行高通量成像,分辨率可達(dá)40 nm。通過(guò)檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)的稀有生理現(xiàn)象,揭示常規(guī)電子顯微鏡不易觀察到的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的關(guān)鍵變化。

  SXT-100能夠?qū)?xì)胞及細(xì)胞器的結(jié)構(gòu)進(jìn)行3D高分辨率無(wú)標(biāo)記成像,能夠獲得細(xì)胞的整體3D結(jié)構(gòu)、體積、組成,并捕捉稀有生理現(xiàn)象,主要應(yīng)用于細(xì)胞結(jié)構(gòu)分析,病毒學(xué)研究,藥物研發(fā)等等。

設(shè)備原理

  傳統(tǒng)的軟X射線(xiàn)顯微鏡所需的X射線(xiàn)需要同步輻射光源產(chǎn)生,意味著顯微鏡必須位于占地?cái)?shù)千平方米以上的同步輻射實(shí)驗(yàn)室內(nèi)。SXT-100的核心技術(shù)是一種小尺寸高性能軟X射線(xiàn)光源,可放置于一般的實(shí)驗(yàn)室內(nèi),發(fā)射的軟X射線(xiàn)經(jīng)過(guò)特有的自愈光學(xué)元件收集、過(guò)濾并將軟X射線(xiàn)聚焦到待成像的細(xì)胞樣本上。軟X射線(xiàn)成像在電磁波譜中的“水窗口”區(qū)域的波長(zhǎng)下進(jìn)行,水不吸收X射線(xiàn),對(duì)X射線(xiàn)相對(duì)透明,但有機(jī)分子會(huì)吸收這些X射線(xiàn),從而使軟X射線(xiàn)圖像具有高對(duì)比度。


設(shè)備特點(diǎn)

☆  細(xì)胞以接近原生狀態(tài)進(jìn)行成像

☆  最高40nm的3D超分辨成像

☆  多角度照射,成像更均勻

☆  圖像具有高對(duì)比度,無(wú)需染色等對(duì)比增強(qiáng)方法

☆  具有多通道熒光成像功能

☆  制樣步驟簡(jiǎn)單


設(shè)備參數(shù):


參數(shù)

軟X射線(xiàn)顯微鏡

視野

30 μm(放大倍數(shù)900x)

圖像3D分辨率

約30 nm(半間距)

圖像獲取時(shí)間

<2小時(shí)(每100個(gè)2D投射)

熒光顯微鏡

熒光通道

5通道:DAPI,GFP,RFP,Cy5,Cy7

樣品

樣品裝載

碳支持膜銅網(wǎng)

超細(xì)玻璃毛細(xì)管

樣品旋轉(zhuǎn)角度

±60°(銅網(wǎng))

±90°(毛細(xì)管)

樣品類(lèi)型

貼壁細(xì)胞(銅網(wǎng))

懸浮細(xì)胞(毛細(xì)管)


測(cè)試數(shù)據(jù):

■  淡水微綠球藻結(jié)構(gòu)

■  在含ZrO納米顆粒的環(huán)境下培養(yǎng)4h的H8N8細(xì)胞

■  ZrO2在H8N8細(xì)胞中的聚集

■  人支氣管上皮細(xì)胞

■  海拉細(xì)胞的線(xiàn)粒體

發(fā)表文章:

Fahy, K., Kapishnikov, S., Donnellan, M., McEnroe, T., O'Reilly, F., Fyans, W., & Sheridan, P. (2024). Laboratory based correlative cryo-soft X-ray tomography and cryo-fluorescence microscopy. Correlative Light and Electron Microscopy V, 293.

 Fahy, K., Weinhardt, V., Vihinen-Ranta, M., Fletcher, N., Skoko, D., Pereiro, E., ... & McEnroe, T. (2021). Compact Cell Imaging Device (CoCID) provides insights into the cellular origins of viral infections. JPhys Photonics, 3(3).

 Kapishnikov, S., Hempelmann, E., Elbaum, M., Als‐Nielsen, J., & Leiserowitz, L. (2021). Malaria pigment crystals: The achilles′ heel of the malaria parasite. ChemMedChem, 16(10), 1515-1532.

 Kapishnikov, S., Staals?, T., Yang, Y., Lee, J., Perez-Berna, A. J., Pereiro, E., ... & Als-Nielsen, J. (2019). Mode of action of quinoline antimalarial drugs in red blood cells infected by Plasmodium falciparum revealed in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences, 116(46), 22946-22952.

Kapishnikov, S., Leiserowitz, L., Yang, Y., Cloetens, P., Pereiro, E., Awamu Ndonglack, F., ... & Als-Nielsen, J. (2017). Biochemistry of malaria parasite infected red blood cells by X-ray microscopy. Scientific reports, 7(1), 802.

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